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生物知识

样本的收集


                                                                                

液体样本的收集

 

1、血清:用无菌管收集,室温血液自然凝固 10-20 分钟,2-8℃条件离心 20 分钟左右 (2000-3000 转/分) ,仔细收集上清,保存过程中如出现沉淀,应再次离心。

2、血浆:应根据标本的要求选择 EDTA、肝素钠或柠檬酸钠作为抗凝剂,混合 10-20 分 钟后,2-8℃条件离心 20 分钟左右 (2000-3000 转/分) ,仔细收集上清,保存过程中如有 沉淀形成,应该再次离心。

3、尿液:用无菌管收集,2-8℃条件离心 20 分钟左右 (2000-3000 转/分) 。仔细收集 上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

4、胸腹水:用无菌管收集,2-8℃条件离心 20 分钟左右 (2000-3000 转/分) ,仔细收 集上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

5、脑脊液:用无菌管收集,2-8℃条件离心 20 分钟左右 (2000-3000 转/分) ,仔细收 集上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

6、唾液:用无菌管收集,2-8℃条件离心 20 分钟左右 (2000-3000 转/分) ,仔细收集 上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

7、细胞培养上清:检测分泌性的成份时,用无菌管收集。2-8℃条件离心 20 分钟左右 (2000-3000 转/分) ,仔细收集上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

8、牛奶:用无菌管收集,2-8℃条件离心 20 分钟左右 (2000-3000 转/分) ,仔细收集 上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

9、蜂蜜:用无菌管收集,2-8℃条件离心 20 分钟左右 (2000-3000 转/分) ,仔细收集 上清,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

10、全血:用含有抗凝剂的无菌管收集,立即轻轻摇动,来回轻轻颠倒数次,使血液和 抗凝剂混匀, 以防血液凝固。

 

固体样本的收集

 

1、组织标本:切割标本后,称取 1g 组织,加入 9ml 的 pH7.2-7.4 左右的 PBS,用手工 或匀浆器将标本匀浆充分。离心 20 分钟左右 (2000-3000 转/分) ,仔细收集上清。分装一 份待检测,其余冷冻备用,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。对于植物组织,不好匀 浆的话,就在液氮中充分研磨。

2、细胞内蛋白样本:许多待测蛋白不是分泌蛋白,而是存在于细胞内的蛋白,这个时

候,要先收集细胞,洗涤干净,再破碎细胞,离心取上清。

 

 

(1) 培养的细胞

A、动物细胞:用 PH7.2-7.4 的 PBS 稀释细胞悬液,使细胞浓度达到 100 万/ml 左右。 通过反复冻融 (如果反复冻融,破碎效果不好,就采用超声波破碎) ,以使细胞破坏并放出 细胞内成份。2-8℃条件离心 20 分钟左右 (2000-3000 转/分) ,仔细收集上清,保存过程 中如有沉淀形成,应再次离心。

B、植物细胞:用 PH7.2-7.4 的 PBS 稀释细胞悬液,使细胞浓度达到 100 万/ml 左右, 置于冰盒上,用超声破碎仪,设置破碎 2s,冷却 30s 的方式,充分破碎细胞,以使细胞破 坏并放出细胞内成份。2-8℃条件离心 20 分钟左右 (2000-3000 转/分) ,仔细收集上清, 保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。

(2) 组织的细胞

切割标本后,称取 1g 组织,加入 9ml 的 pH7.2-7.4 左右的 PBS,用手工或匀浆器将标 本匀浆充分。2-8℃条件离心 20 分钟左右 (2000-3000 转/分) ,去除上清,再用 pH7.2-7.4 左右的 PBS 小心洗涤沉淀的细胞三遍。再用上述的细胞破碎方法破碎细胞。

3、细胞内蛋白样本:许多待测蛋白不是分泌蛋白,而是存在于细胞内的蛋白,这个时

候,要先收集细胞,洗涤干净,再破碎细胞,离心取上清。

4、咽拭子:加入 2ml 的 pH7.2-7.4 左右的 PBS,溶解咽拭子头部,摇匀,用镊子取出 咽拭子并挤干液体,2-8℃条件离心 20 分钟左右 (2000-3000 转/分) ,仔细收集上清。分 装一份待检测,其余冷冻备用,保存过程中如有沉淀形成,应再次离心。如果是测分泌蛋白, 直接取上清检测,测试细胞内蛋白,要破碎细胞。

5、植物标本:取组织块 (0.2g~0.5g) 最少可到 5~10mg 在冰冷的 PBS 中漂洗,滤纸 拭干,准确称重,放入 5ml 的匀浆管中;按重量(mg):体积(ml)=1:9 的比例加入 9 倍体积的 匀浆介质于匀浆管中,冰水浴条件下,用眼科小剪尽快剪碎组织块;匀浆的方式:手工匀浆, 机器匀浆。  ① 手工匀浆:左手持匀浆管将下端插入盛有冰水混合物的器皿中,右手将捣杆 垂直插入套管中,上下转动研磨数十次 (6~8 分钟) ,充分研碎,制成 20%的匀浆液。 ② 机 器匀浆:用组织捣碎机 10000~15000 转/分 上下研磨制成 10%组织匀浆,也可用内切式组 织匀浆机制备 (匀浆时间 10 秒/次,间隙 30 秒,连续 3~5 次,在冰水中进行,可适当延长 匀浆时间) ,镜检观察:取少量组织匀浆作涂片 (直接涂片、染色均可以) ,显微镜下观察 细胞是否破碎,若没有则可延长匀浆时间。将制备好的 10%匀浆液用普通离心机或低温低速 离心机 4000 转/分左右,离心 10~15 分钟,取上清液进行测定。

 

样本的要求

 

1、标本采集后尽早进行提取,提取按相关文献进行,提取后应尽快进行实验。若不能 马上进行试验,可将标本放于-20℃保存,但应避免反复冻融。

2、不能检测含NaN3 的样品,因 NaN3 抑制辣根过氧化物酶的 (HRP) 活性。

3、以上是通用的样本处理方法,无法涵盖各种样本,对于一些特殊样本,建议实验人 员多参考已发表的文献, 自行设计合理的样本处理方法

 

 

 


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